- | Testplättchen, Reagenzgläser und Kalibrierungschips aus verschiedenen Chargen nicht mischen. |
- | Die Reagenzlösung und das Testplättchen mindestens 10 Minuten vor der Verwendung auf Raumtemperatur (18°C bis 27°C) aufwärmen lassen. |
- | Die Parameter des Speed Reader-Analyser einstellen, wie in der Bedienungsanleitung beschrieben. |
- | Mit der Spitze des Tropfverschlusses die Aluminiumfolie perforieren, um das Reagenzglas vollständig zu öffnen. |
- | Eine neue Einwegspitze auf die Pipette aufsetzen. |
- | Unter Beachtung der Anweisung für die ordnungsgemäße Anwendung der Pipette 50 µl der Probe in das Reagenzglas transferieren. Dabei mit der Spitze nicht die Wände des Reagenzglases berühren. |
- | Das Reagenzglas vorsichtig mit dem Tropfverschluss verschließen. |
- | Den Inhalt durch 5-maliges Umkehren des Reagenzglases vorsichtig mischen. NICHT SCHÜTTELN! |
- | Die Plastikabdeckung des Tropfverschlusses entfernen und die ersten 2 Tropfen des Gemischs verwerfen, um den Totraum im Tropfverschluss auszuwaschen. |
- | 2 Tropfen des Gemischs in die Probenöffnung des Testplättchens geben. |
- | Das Testplättchen bei Aufforderung durch den Analyser in den Plättchenhalter des Speed Reader in Pfeilrichtung einsetzen (zuerst die Probenöffnung) und die Anweisungen auf dem Bildschirm befolgen. |
- | Das Ergebnis auf dem Bildschirm ablesen. |
Referenzwerte | |
Normal: ≤ 50 ng/mL | → BPH unwahrscheinlich |
Fraglich: 50 - 70 ng/mL | → BPH möglich |
Hoch: ≥ 70 ng/mL | → Übereinstimmung mit BPH |
- | Nur Serum- oder Plasmaproben verwenden (Li-Heparin). Kein Vollblut oder Plasma EDTA verwenden. |
- | Es wurde keine Beeinträchtigung der Ergebnisse durch Hämolyse oder Hyperlipämie beobachtet. |
- | Das Serum oder Plasma in ein Trockenröhrchen transferieren, falls der Test nicht innerhalb einer Stunde durchgeführt wird. |
- | Bei Testdurchführung innerhalb 24 Stunden nach Probennahme: Serum oder Plasma im Kühlschrank (+2°C bis +8°C) lagern. |
- | Testdurchführung später als 24 Stunden nach Probennahme: Serum oder Plasma im Gefrierschrank (-20°C) lagern. |
- | Die gelagerten Proben vor der Analyse auf Raumtemperatur (18°C bis 27°C) aufwärmen lassen und zentrifugieren. |
- | Die Anwesenheit von Fibrinsträngen in der Probe kann aufgrund verstopfter Pipetten und einem verringerten Volumen der angesaugten Probe zu fehlerhaften Testergebnissen führen. In diesem Fall ist die Probe erneut zu zentrifugieren. |
- | Zur Sicherstellung des korrekten Probenvolumens die Pipette, die Probe und die Reagenzgläser stets in vertikaler Position halten. |
- | Für jede Untersuchung eine neue Einmalpipette verwenden. |
- | Den Pipettenkolben drücken und halten und die Spitze in die Probe einführen, ohne dabei die Wand des Reagenzglases zu berühren. Den Pipettenkolben bei eingetauchter Spitze langsam lösen. |
- | Die Pipette aus dem Reagenzglas herausnehmen und auf Luftblasen in der Spitze überprüfen. Falls Luftblasen vorhanden sind, Probe verwerfen und Probenentnahme wiederholen. |
- | Zur Sicherstellung einer ordnungsgemäßen Migration der Probe das Testplättchen auf einer horizontalen Oberfläche abstellen. |
- | Das Reagenzglas enthält eine Standardmenge der Reagenzlösung. Jede Veränderung dieser Menge kann zu fehlerhaften Testergebnissen führen. |
- | Das Gemisch mit der Probe/Reagenzlösung sofort nach der Rekonstitution verwenden. |
- | Das Gemisch nicht für weitere Analysen aufbewahren. |
- | Bevor sie den ersten Test einer Box verwenden, speichern sie bitte den Batch-Kalibrierungschip im Speed Reader ab. |
- | Das Verfallsdatum ist auf jeder Testverpackung und jedem Karton aufgedruckt. |
- | Die Tests und Reagenzien zwischen +2°C und +8°C lagern. |
- | Die Probe und alle für das Testverfahren verwendeten Materialien sollten als potenziell infektiös betrachtet und gemäß lokalen Bestimmungen entsorgt werden. |
- | Verwenden sie geeignete und saubere Schutzkleidung (Handschuhe und Kittel). |
- | Bei versehentlichen Kontakt der Reagenzien mit Augen oder Haut, waschen sie diese gründlich mit sauberem Wasser und ziehen sie einen Arzt zu Rate. |
Informationsstand: 15.06.2018